2,3-Dimethylbuttersäure

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Strukturformel
Strukturformel von 2,3-Dimethylbuttersäure
Vereinfachte Strukturformel ohne Stereochemie
Allgemeines
Name 2,3-Dimethylbuttersäure
Andere Namen
  • 2,3-Dimethylbutansäure (IUPAC)
  • Methylisopropylessigsäure
  • 2-Methylisovaleriansäure
Summenformel C6H12O2
Kurzbeschreibung

farblose Flüssigkeit[1]

Externe Identifikatoren/Datenbanken
CAS-Nummer
EG-Nummer 238-208-0
ECHA-InfoCard 100.034.719
PubChem 26608
ChemSpider 24786
Wikidata Q27117929
Eigenschaften
Molare Masse 116,16 g·mol −1
Aggregatzustand

flüssig

Dichte
  • 0,9446 g·cm−3 (0 °C)[2]
  • 0,928 g·cm−3 (15 °C)[3]
  • 0,9275 g·cm−3 (20 °C)[2]
  • 0,922 g·cm−3 (25 °C)[4]
Schmelzpunkt

−1,6 °C [5]

Siedepunkt

191,4–191,8 °C[Anm. 1]

Löslichkeit

schlecht in Wasser,[6] gut in MTBE [1]

Brechungsindex
  • 1,415 (20 °C)[1]
  • 1,4129 (25 °C)[7]
Sicherheitshinweise
GHS-Gefahrstoffkennzeichnung [8]
Gefahrensymbol Gefahrensymbol

Gefahr

H- und P-Sätze H: 302​‐​314​‐​335
P: 280​‐​305+351+338 [9]
Wenn nicht anders vermerkt, gelten die angegebenen Daten bei Standardbedingungen (0 °C, 1000 hPa). Brechungsindex: Na-D-Linie, 20 °C

2,3-Dimethylbuttersäure ist eine chemische Verbindung aus der Gruppe der chiralen aliphatischen Carbonsäuren. Sie ist eines der sieben Skelettisomere von Capronsäure und leitet sich formal von Buttersäure ab. Mit einem Stereozentrum (α-ständig zur Carboxylgruppe, Position 2) tritt die verzweigtkettige Verbindung in zwei Enantiomeren auf. Man findet sie vereinzelt sowohl in der belebten als auch der unbelebten Natur: die freie Säure etwa als Stoffwechselprodukt kohlenwasserstoffverarbeitender Bakterien oder in Spuren auf Meteoriten, in gebundener Form unter anderem in mehreren Wolfsmilcharten, zu deren Reizwirkung Diterpenester der 2,3-Dimethylbuttersäure wesentlich beitragen. Verwendung findet sie in erster Linie als Ausgangsstoff zur Synthese anderer Verbindungen. Erstmals genauer charakterisiert wurde sie 1886 durch van Romburgh.

Der systematische Name der Verbindung lautet 2,3-Dimethylbutansäure. Früher war die Bezeichnung als Methylisopropylessigsäure üblich, ergo als eine mit Methyl- und Isopropylgruppe substituierte Essigsäure, worin sich die klassische Gewinnung durch Malonestersynthese widerspiegelt. Ihre Salze und Ester heißen 2,3-Dimethylbutyrate oder 2,3-Dimethylbutanoate, die Acylgruppe 2,3-Dimethylbutyryl- oder 2,3-Dimethylbutanoyl-Gruppe.

Pieter van Romburgh als Rektor der Universität Utrecht (1918).

Erstmals genauer beschrieben wurde 2,3-Dimethylbuttersäure durch Pieter van Romburgh im Jahre 1886[3] im Rahmen der Strukturaufklärung einer bis dahin unbekannten Komponente römischen Kamillenöls, 3-Methyl-1-pentanol.[10] Sein Zugang durch Malonestersynthese ist heute noch der lehrbuchartige Weg zur Darstellung von 2,3-Dimethylbuttersäure.[1] Er ging davon aus, dass bereits zwanzig Jahre zuvor Wladimir Wassiljewitsch Markownikow [11] sie aus einem Amylen erhalten, aber nicht näher charakterisiert hatte.[3]

Zypressen-Wolfsmilch enthält mehrere reizende Diterpenester der 2,3-Dimethylbuttersäure, die Cyparissias-Faktoren.

Freie 2,3-Dimethylbuttersäure wurde in sonnengetrocknetem Virginischen Tabak [12] und manchen Cantaloupe-Melonen [13] sowie im Sekret des Weißschwanzgnu [14] gefunden. Festgestellt wurde sie auch im Zellkulturüberstand bei gemeinschaftlicher Fermentation von Garnelenschalen durch Bacillus subtilis und Lactiplantibacillus plantarum .[15] Die hydrocarbonoklastischen Bakterienarten Gordonia terrae und Rhodococcus erythropolis sind imstande, vicinal dimethylsubstituierte Alkane zu 2,3-Dimethylbuttersäure zu oxidieren.[16] Gebunden als Ester von Diterpenen findet sie sich in verschiedenen Wolfsmilcharten.[17] Diese Euphorbia-Faktoren genannten Diterpenester vom Ingenan-Typ sind stark reizend, wobei die Stärke der Reizwirkung unter anderem von der Position der 2,3-Dimethylbutyrylgruppe abhängt.[18] Der Methylester 2,3-Dimethylbuttersäuremethylester findet sich als mikrobielle flüchtige organische Verbindung im Gießkannenschimmel Emericella nidulans [19] und in Holzfäule.[20]

Abiotischen Ursprungs ist 2,3-Dimethylbuttersäure, die – neben anderen organischen Verbindungen – in verschiedenen kohligen Chondriten nachgewiesen wurde, namentlich dem Murchison-Meteoriten [21] sowie den in der Antarktis niedergegangenen Chondriten Yamato 791198,[22] Asuka 881458 [23] und Lonewolf Nunataks 94101.[21] Einen massenspektrometrischen Hinweis auf ihr Vorhandensein gibt es auch für den Murray-Meteorit.[24] Im Hinblick auf die chemische Evolution ist dabei das Enantiomerenverhältnis chiraler Alkansäuren wie 2,3-Dimethylbuttersäure von Interesse: Soweit bisher untersucht (Murchison und LON 94101), handelt es sich dabei stets um racemische Gemische – während bei den ebenfalls gefundenen Aminosäuren wie 2-Amino-2,3-dimethylbuttersäure [25] oft ein leichter Enantiomerenüberschuss besteht, der in Richtung der Homochiralität der Aminosäuren irdischer Lebewesen weist.[21]

Aufbauende Synthesen

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Da eine Methylierung von Alkylgruppen nicht ohne Weiteres möglich ist, solange diese nicht durch benachbarte funktionelle Gruppen aktiviert sind, geht man für die Synthese von 2,3-Dimethylbuttersäure nicht von der Stammverbindung Buttersäure aus. Altbewährt ist die van Romburghsche Methode der Malonestersynthese.[3] [7] [1] An der CH-aciden Position zwischen den beiden Estergruppen von Malonsäurediethylester können durch zwei Substitutionsreaktionen die Methyl- und die Isopropylgruppe eingeführt werden. Nach Verseifung des Carbonsäureesters begünstigt die β-ständige Carbonylgruppe die einmalige Decarboxylierung der entstandenen Dicarbonsäure zur zweifach substituierten Essigsäure.[26] Nur von historischem Interesse ist dagegen die ebenfalls von van Romburgh beschriebene Darstellung aus Acetessigester mit geringer Ausbeute.[3]


Wege der Malonestersynthese: Entweder zuerst Methylierung zu Methylmalonsäurediethylester (oben, zeitgenössische Variante)[7] [1] oder Isopropylierung zu Isopropylmalonsäurediethylester [S 3] (unten, von van Romburgh bevorzugt)[3] , dann Umsetzung zu Methylisopropylmalonsäurediethylester,[S 4] schließlich Verseifung mit Kaliumhydroxid, Ansäuern mit Schwefelsäure und Decarboxylierung in der Hitze. Als Mittel zur Alkylierung in den ersten beiden Stufen – jeweils nach Deprotonierung mit Natriumethanolat – können sowohl die entsprechenden Brom- (Methylbromid, Isopropylbromid) als auch Iod-Verbindungen (Methyliodid, Isopropyliodid) eingesetzt werden. Kohlensäurediethylester dient als höhersiedendes Lösungsmittel, um eine ausreichende Reaktionsgeschwindigkeit zu erreichen.

Eine dreistufige Synthese ausgehend vom Ethylester der 2-Brompropionsäure, 2-Brompropansäureethylester,[S 5] beginnt mit einer Reformatzki-Reaktion mit Aceton. Aus dem gebildeten Alkohol kann infolge der CH-Acidität leicht Wasser abgespalten werden. Anschließende Hydrierung der dabei entstehenden Doppelbindung liefert 2,3-Dimethylbuttersäure.[27] Weitere Synthesewege sind die Carboxylierung von 2-Chlor-3-methylbutan,[S 6] [28] die nucleophile Ringöffnung von 2,3-Dimethylpropiolacton [S 7] mit dem Normant-Cuprat Me2CuMgBr aus Methylmagnesiumbromid, Kupfer(I)-iodid und Lithiumchlorid,[29] sowie Abwandlungen der Malonestersynthese mit Sulfonylderivaten.[30] [31] Bei der Oxidation von 2,3-Dimethylbutan mit Chrom(VI)-oxid entsteht ebenfalls 2,3-Dimethylbuttersäure, allerdings hält die Reaktion dort nicht an und liefert zusätzlich die Spaltprodukte Aceton und 3-Methylbutanon sowie Trimethylacrylsäure.[S 8] [32]

Enantioselektive Synthesen

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Racemische 2,3-Dimethylbuttersäure kann durch mehrfache Umkristallisation mit Chinin aufgetrennt werden.[33] Außerdem gibt es Möglichkeiten zur gezielten Synthese eines Enantiomers:

Eine enantioselektive Syntheseroute in drei Stufen ausgehend von Isovaleriansäure ist die Methode von Evans.[34] Hier ist die β-ständige Methylgruppe (in Position 3) bereits vorhanden, sodass nur noch die α-ständige Methylgruppe in Position 2 eingeführt werden muss, welche durch die benachbarte Carbonylgruppe schwach CH-acid ist. Hierzu muss zunächst die Carbonsäurefunktion maskiert werden. Die Bildung des Amids mit geeigneten chiralen Aminen erfüllt diese Aufgabe, wodurch die Methylierung in Position 2 möglich wird, und dirigiert sie zugleich in Richtung eines Enantiomers, das nach Hydrolyse des α-methylierten Amids im Überschuss erhalten werden kann. Mit (S)-Prolinol wurde so (S)-2,3-Dimethylbuttersäure in 90 %iger optischer Reinheit erhalten,[35] und mit (R)-4-Benzyl-2-oxazolidinon [S 9] – mit zusätzlicher Umkristallisation des α-methylierten Amids – enantiomerenreine (R)-2,3-Dimethylbuttersäure.[36] Analog kann auch das Racemat aus Isovaleriansäure gewonnen werden; in diesem Fall ist die Amidbildung überhaupt entbehrlich, wenn entsprechend größere Mengen Lithiumorganyl eingesetzt werden.[37]


Enantioselektive Synthese nach Evans: 1. Bildung des Säurechlorids von Isovaleriansäure mit Oxalylchlorid und Umsetzung zum Amid mit (S)-Prolinol in Methylenchlorid und Triethylamin als Base. 2. Deprotonierung mit Lithiumdiisopropylamid in Hexamethylphosphorsäuretriamid und Methylierung des Enolats mit Methyliodid in Tetrahydrofuran bei −78 °C. 3. Hydrolyse mit Salzsäure zu (S)-2,3-Dimethylbuttersäure.

Eine andere Methode ist die stereoselektive Hydrierung. Mit einem chiralen Iridium-Komplex als Katalysator und Caesiumcarbonat als Base gelang die Hydrierung von 2-Isopropylacrylsäure [S 10] zu 2,3-Dimethylbuttersäure mit einem Enantiomerenüberschuss von 96 %.[38]

Gewinnung aus Naturstoffen

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Ein alternativer Zugang ist die ozonolytische Abspaltung der Seitenkette von Ergosterin mit anschließender Oxidation des freigesetzten Aldehyds 2,3-Dimethylbutanal.[S 11] Diese Reaktion kann genutzt werden, um durch Identifikation des Oxidationsprodukts 2,3-Dimethylbuttersäure Ergosterin von Sterinen mit anderer Seitenkette zu unterscheiden.[39] Entsprechende Seitenketten finden sich auch im Sterin Cyclonervilasterol [S 12] und seinem Epimer 24-Epicyclonervilasterol [S 13] (das epimere Zentrum entspricht dem Chiralitätszentrum der 2,3-Dimethylbuttersäure), enthalten im Orchideenpräparat I-Tiam-Hong aus der traditionellen Medizin auf Taiwan.[40] Die Freisetzung von Seitenketten als 2,3-Dimethylbuttersäure beim oxidativen Aufschluss der unlöslichen organischen Bestandteile des Murchison-Meteoriten ist allein analytisch von Bedeutung.[41]

Siedediagramm von 2,3-Dimethylbuttersäure: Auftragung literaturbekannter Siedepunkte (orange). Gestrichelt eingetragen ist die ermittelte Siedekurve nach linearer Regression gemäß der Antoine-Gleichung (blau). Alle Messwerte finden sich mit Angabe der Fundstellen in der Dateibeschreibung.

Unter Normalbedingungen ist 2,3-Dimethylbuttersäure eine farblose Flüssigkeit von intensivem Geruch.[Anm. 2] Ihre Säurekonstante beträgt p K a = 4 , 75 {\displaystyle {\text{p}}K_{\text{a}}=4{,}75} {\displaystyle {\text{p}}K_{\text{a}}=4{,}75}. Im Vergleich der undissoziierten isomeren Carbonsäuren ist sie mit einem Octanol-Wasser-Verteilungskoeffizient von log ⁡ K ow = 1 , 55 {\displaystyle \log {K_{\text{ow}}}=1{,}55} {\displaystyle \log {K_{\text{ow}}}=1{,}55} (gemessen gegen verdünnte Salzsäure, um unabhängig von der Säurestärke stets die Löslichkeit der undissoziierten Carbonsäure zu messen) noch am ehesten wasserlöslich, aber immer noch deutlich stärker lipophil als hydrophil.[6] Der spezifische Drehwinkel des (R)-Enantiomers wird mit [ α ] D 25 = − 18 , 9 ∘ {\displaystyle \left[\alpha \right]_{\text{D}}^{25}=-18{,}9^{\circ }} {\displaystyle \left[\alpha \right]_{\text{D}}^{25}=-18{,}9^{\circ }} angegeben, entsprechend einem molaren spezifischen Drehwinkel von [ M ] D 25 = − 21 , 9 ∘ {\displaystyle \left[M\right]_{\text{D}}^{25}=-21{,}9^{\circ }} {\displaystyle \left[M\right]_{\text{D}}^{25}=-21{,}9^{\circ }},[33] bzw. mit [ α ] D 20 = − 22 , 8 ∘ {\displaystyle \left[\alpha \right]_{\text{D}}^{20}=-22{,}8^{\circ }} {\displaystyle \left[\alpha \right]_{\text{D}}^{20}=-22{,}8^{\circ }}.[42]

Die Fachliteratur kennt zahlreiche Reaktionen von 2,3-Dimethylbuttersäure 1, die typisch für aliphatische Carbonsäuren sind. Beschrieben sind etwa die Bildung verschiedener Ester 2[43] [44] [45] und Amide 3[3] [7] [46] [47] [48] sowie die α-Bromierung.[49] [50] Aus dem α-bromierten Produkt 4 lässt sich nach Eliminierung von Bromwasserstoff Trimethylacrylsäure 5 gewinnen;[51] durch Substitution des Brom-Atoms mit Ammoniak ist auch die Darstellung der nichtproteinogenen Aminosäure α-Methylvalin möglich.[52] Mit Lithiumaluminiumhydrid lässt sich 2,3-Dimethylbuttersäure zu 2,3-Dimethylbutan-1-ol [S 14] 6 reduzieren.[53] [37] Aus dem Lithium-Derivat der 2,3-Dimethylbuttersäure, wie es als Zwischenprodukt bei der Darstellung aus Isovaleriansäure auftritt, kann man auch direkt in drei weiteren Stufen 2,3,4-Trimethylpentan-2-ol [S 15] 7 erhalten.[54] Möglich ist auch die Umwandlung in ein aminosubstituiertes Azirin-Derivat 8, wodurch entsprechend substituierte 1,3-Thiazol-5(4H)-thione 9 zugänglich werden.[55]


Schema möglicher Syntheseprodukte ausgehend von 2,3-Dimethylbuttersäure (im Uhrzeigersinn wie im vorstehenden Text beschrieben).

Im Vergleich der isomeren Carbonsäuren gehen bei 2,3-Dimethylbuttersäure sowohl Bildung als auch Verseifung des Methylesters langsam vonstatten (viel langsamer als bei Capronsäure und Isocapronsäure), was auf sterische Hinderung durch die α-verzweigte aliphatische Kette zurückgeführt wird.[56]

2,3-Dimethylbuttersäure wird in erster Linie zur Herstellung anderer Verbindungen verwandt, beispielsweise in der Synthese von Naturstoffen. So ist die Synthese des (R)-Enantiomers etwa der erste Schritt in der Totalsynthese der Fettsäurekomponente von Homophymin A,[S 16] einem cyclischen Depsipeptid (Cyclodepsipeptid) aus einer Schwammart der Gattung Homophymia , das aufgrund zytoprotektiver Eigenschaften gegen Infektion mit HIV1 untersucht wurde.[36] Auch die Seitenkette von Campesterin kann nach Reduktion zum Alkohol aus 2,3-Dimethylbuttersäure aufgebaut werden.[44] Beide Enantiomere werden im Rahmen rationalen Wirkstoffdesigns als Bausteine für die Entwicklung maßgeschneiderter Liganden in Betracht gezogen.[57] Patentiert ist außerdem die Herstellung eines Flotationsmittels zur Gewinnung von Niob aus Columbit.[58] Die meisten Patente, in denen 2,3-Dimethylbuttersäure erwähnt wird, beziehen sich pauschal auf eine Vielzahl möglicher Carbonsäurederivate und nicht auf die freie Säure. Als Beispiel für eine Ausnahme hiervon sei der mögliche Einsatz als Carbonsäurekomponente in einem Mittel zur Abwehr von Haien erwähnt.[59]

Stoffeigenschaften wie der Siedepunkt bei der Destillation und der Brechungsindex der abdestillierten Flüssigkeit können bei ausreichender Reinheit bereits zur Identifikation dienen.[1] Neben der freien Säure wurde früher die Umsetzung zu Calcium- und Silbersalzen zur Unterscheidung der 2,3-Dimethylbuttersäure von anderen Carbonsäuren anhand der Löslichkeit herangezogen.[11] [60] Das Calciumsalz löst sich in warmem Wasser schlechter als in kaltem. Beim Eindampfen scheidet sich zunächst ein Film an der Oberfläche ab, bevor das Salz als gummiartige, amorphe Masse ausfällt. Bei Zusatz von Alkohol kristallisiert das Monohydrat als feine Nadeln aus; das Kristallwasser lässt sich im Exsikkator über Schwefelsäure entfernen.[3] Um Unklarheiten zu beseitigen, können auch Derivate wie 2,3-Dimethylbuttersäureamid [S 17] (mit Ammoniak) gebildet und zusätzlich deren Stoffeigenschaften herangezogen werden.[3]

Als verzweigte aliphatische Carbonsäure zeigen die 1H-Atome von 2,3-Dimethylbuttersäure im Kernspinresonanzspektrum (NMR) gut definierte, charakteristische Signale. NMR ist daher die übliche instrumentelle Methode zur sicheren Identifikation nach einer Synthese. Das Infrarotspektrum (IR) ist dagegen weniger aussagekräftig und wird in der Forschung nur selten herangezogen. Zum Nachweis in komplexen Gemischen mit vielen Komponenten bedient man sich Gaschromatographie mit Massenspektrometrie-Kopplung (GC-MS).

  • Signale im 1H-NMR-Spektrum (200 MHz, CDCl3): δ = 0,91 ppm (3H, d, 3J = 7,0 Hz, CH3), 0,94 ppm (3H, d, 3J = 7,0 Hz, CH3), 1,11 ppm (3H, d, 3J = 7,0 Hz, CH3), 1,96 ppm (1H, m, CH), 2,28 ppm (1H, quint, 3J = 7 Hz, CH).[42]
  • Signale im 13C-NMR-Spektrum (50,1 MHz, CDCl3): δ = 13,6 ppm, 19,1 ppm, 20,85 ppm, 30,9 ppm, 46,1 ppm, 182,8 ppm.[42]
  • Signale im IR-Spektrum (Film): νmax = 3500–3200 cm−1, 1705 cm−1, 949 cm−1.[42]
  • Signale im Massenspektrum (GC-MS, EI+): m/z 101 (8 %), 83 (3 %), 74 (100 %), 73 (23 %), 56 (15 %), 55 (15 %), 45 (15 %), 43 (36 %), 41 (33 %), 39 (20 %).[14]

1H-NMR-Spektrum von 2,3-Dimethylbuttersäure (300 MHz, CDCl3), markiert von links nach rechts: Carboxyl-H (aufgrund der Acidität stark verbreitertes und verrauschtes Signal im vergrößerten Ausschnitt, blau), H-Atom am chiralen Zentrum, Methin-H der Isopropylgruppe, drei Methyl-H am chiralen Zentrum, sechs Methyl-H der Isopropylgruppe. Deutlich erkennbar die Diastereotopizität der Methylgruppen innerhalb der Isopropylgruppe neben dem chiralen Zentrum, die zu zwei leicht unterschiedlich verschobenen Dublettsignalen führt. Mit herstellungsbedingten Spuren von Aceton und Schlifffett, unmarkiert.
  1. ↑ Alle literaturbekannten Siedepunkte finden sich mit Angabe der Fundstellen in der Dateibeschreibung des Siedediagramms.
  2. ↑ In der Literatur findet sich die Angabe, 2,3-Dimethylbuttersäure röche nach Schweiß, s. Pedro Martínez Noguera, Matteo Egiddi, Julia Södergren, Mariana Rodrigues da Silva, Jonathan Beauchamp, Mikael Agerlin Petersen, Andrea Buettner, Niels O. G. Jørgensen: More than just geosmin and 2-methylisoborneol? Off-flavours associated with recirculating aquaculture systems. In: Reviews in Aquaculture , 2024, Band 16, S. 2034–2063, doi:10.1111/raq.12949. – Hierbei dürfte es sich allerdings um einen Übertragungsfehler handeln, da die dort referierte Studie nur 2-/3-methylbutanoic acid tabelliert, vgl. Mohamed A. A. Mahmoud, Thorsten Tybussek, Helene M. Loos, Maria Wagenstaller, Andrea Buettner: Odorants in Fish Feeds: A Potential Source of Malodors in Aquaculture. In: Frontiers in Chemistry , 2018, Band 6, 241, doi:10.3389/fchem.2018.00241.

Einzelnachweise

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  1. ↑ a b c d e f g Reinhard Brückner, Stefan Braukmüller, Hans-Dieter Beckhaus, Jan Dirksen, Dirk Goeppel, Martin Oestreich: Praktikum Präparative Organische Chemie, Band 1: Organisch-Chemisches Grundpraktikum. Spektrum Akademischer Verlag, Heidelberg 2008, ISBN 978-3-8274-1505-9, S. 335.
  2. ↑ a b M. Hommelen: De l'identification des hexanoïques. In: Bulletin des Sociétés Chimiques Belges , 1933, Band 42, S. 243–250, doi:10.1002/j.0037-9646.1933.tb00025.x. Z. n. Reaxys, abgerufen am 28. Dezember 2024.
  3. ↑ a b c d e f g h i P. van Romburgh: Sur l’acide méthylisoyropylacétique préparé avec l’éther méthylisopropylacétylacétique et avec l’acide méthylisopropylmalonique. In: Recueil des Travaux Chimiques des Pays-Bas, 1886, Band 5, S. 228–239, doi:10.1002/recl.18860050704.
  4. ↑ Lardicci et al.: Chimica e l'Industria, 1968, Band 50, S. 227,228. Z. n. Reaxys, abgerufen am 28. Dezember 2024.
  5. ↑ J. Timmermans: Recherches sur la Température de Congélation des substances organiques. XVI. Nouvelles Déterminations expérimentales. In: Bulletin des Sociétés Chimiques Belges , 1952, Band 61, S. 393–402, doi:10.1002/bscb.19520610706.
  6. ↑ a b Graham Daw, Andrew C. Regan, C. Ian F. Watt, Evan Wood: Steric effects and mechanism in the formation of hemi-acetals from aliphatic aldehydes. In: Journal of Physical Organic Chemistry , 2013, Band 26, S. 1048–1057, doi:10.1002/poc.3138.
  7. ↑ a b c d Sidney H. Metzger, A. F. Isbell: Highly Branched Alkylphosphorus Compounds. I. Synthesis of 2,3-Dimethylbutylphosphonyl Chloride. In: The Journal of Organic Chemistry , 1964, Band 29, S. 623–627, doi:10.1021/jo01026a025.
  8. ↑ Vorlage:CL Inventory/nicht harmonisiert Für diesen Stoff liegt noch keine harmonisierte Einstufung vor. Wiedergegeben ist eine von einer Selbsteinstufung durch Inverkehrbringer abgeleitete Kennzeichnung von 2,3-dimethylbutyric acid im Classification and Labelling Inventory der Europäischen Chemikalienagentur (ECHA), abgerufen am 16. Dezember 2024.
  9. ↑ BLD Pharmatech Safety Data Sheet, Version 6.2, Revision vom 30. Januar 2024, Druckdatum 28. Juli 2024, abgerufen am 16. Dezember 2024.
  10. ↑ P. van Romburgh: Sur l’alcool hexylique dextrogyre de l’essence de Camomille romaine. In: Recueil des Travaux Chimiques des Pays-Bas, 1886, Band 5, S. 219–227, doi:10.1002/recl.18860050703.
  11. ↑ a b vgl. W. Markownikoff: Untersuchungen über Isomerie der Fettsäurereihe. In: Zeitschrift für Chemie , 1866, Band II (Jg. 9), S. 501–503.
  12. ↑ B. Kimland, A. J. Aasen, S.-O. Almqvist, P. Arpino, C. R. Enzell: Volatile acids of sun-cured greek Nicotiana tabacum. In: Phytochemistry, 1973, Band 12, S. 835–847, doi:10.1016/0031-9422(73)80688-0.
  13. ↑ Rita Metrani, Guddadarangavvanahally K. Jayaprakasha, Bhimanagouda S. Patil: Optimization of Experimental Parameters and Chemometrics Approach to Identify Potential Volatile Markers in Seven Cucumis melo Varieties Using HS–SPME–GC–MS. In: Food Analytical Methods , 2022, Band 15, S. 607–624, doi:10.1007/s12161-021-02119-9.
  14. ↑ a b Barend V. Burger, Desmond Slade, Marlize Z. Bekker, Aron H. Goitom: Mammalian exocrine secretions XIX. Chemical characterization of the interdigital secretion of the Black Wildebeest, Connochaetes gnou. In: Zeitschrift für Naturforschung C , 2020, Band 75, S. 339–351, doi:10.1515/znc-2019-0159.
  15. ↑ Yun Nian Tan: Upcycling of biomaterials from seafood waste and their applications. Dissertation, Nanyang Technological University 2021, S. 66. Online verfügbar auf der Website der Universität.
  16. ↑ Annett Mikolasch, Anne Reinhard, Anna Alimbetova, Anel Omirbekova, Lisa Pasler, Peter Schumann, Johannes Kabisch, Togzhan Mukasheva, Frieder Schauer: From oil spills to barley growth – oil-degrading soil bacteria and their promoting effects. In: Journal of Basic Microbiology , 2016, Band 56, S. 1252–1273, doi:10.1002/jobm.201600300.
  17. ↑ Giovanni Appendino: Ingenane Diterpenoids. In: A. Douglas Kinghorn, Heinz Falk, Simon Gibbons, Jun'ichi Kobayashi (Hrsg.): Progress in the Chemistry of Organic Natural Products: Volume 102. Springer, 2016, ISBN 978-3-319-33172-0, S. 33–39.
  18. ↑ H. H. Ott, E. Hecker: Highly irritant ingenane type diterpene esters from Euphorbia cyparissias L. In: Experientia, 1981, Band 37, S. 88–91, doi:10.1007/BF01965588.
  19. ↑ Guido Fischer, Regina Schwalbe, Manfred Möller, Rene Ostrowski, Wolfgang Dott: Species-specific production of microbial volatile organic compounds (MVOC) by airborne fungi from a compost facility. In: Chemosphere , 1999, Band 39, S. 795–810, doi:10.1016/S0045-6535(99)00015-6.
  20. ↑ Rumi Konuma, Kiwamu Umezawa, Atsushi Mizukoshi, Kensuke Kawarada, Makoto Yoshida: Analysis of microbial volatile organic compounds produced by wood-decay fungi. In: Biotechnology Letters , 2015, Band 37, S. 1845–1852, doi:10.1007/s10529-015-1870-9.
  21. ↑ a b c José C. Aponte, Rafael Tarozo, Marcelo R. Alexandre, Conel M.O’D. Alexander, Steven B. Charnley, Christian Hallmann, Roger E. Summons, Yongsong Huang: Chirality of meteoritic free and IOM-derived monocarboxylic acids and implications for prebiotic organic synthesis. In: Geochimica et Cosmochimica Acta , 2014, Band 131, S. 1–12, doi:10.1016/j.gca.2014年01月03日5.
  22. ↑ Akira Shimoyama, Hiroshi Naraoka, Hiroshi Yamamoto, Kaoru Harada: Carboxylic Acids in the Yamato-791198 Carbonaceous Chondrites from Antarctica. In: Chemistry Letters , 1986, Band 15, S. 1561–1564, doi:10.1246/cl.1986.1561.
  23. ↑ Hiroshi Naraoka, Akira Shimoyama, Kaoru Harada: Molecular Distribution of Monocarboxylic Acids in Asuka Carbonaceous Chondrites from Antarctica. In: Origins of Life and Evolution of Biospheres , 1999, Band 29, S. 187–201, doi:10.1023/A:1006547127028.
  24. ↑ George U. Yuen, Keith A. Kvenvolden: Monocarboxylic Acids in Murray and Murchison Carbonaceous Meteorites. In: Nature , 1973, Band 246, S. 301–303, doi:10.1038/246301a0.
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